desinДезинфектологияDisinfectology3033-64653033-7739Федеральный научный центр гигиены им. Ф. Ф. Эрисмана10.47470/dez019PEKGVTdesin-89Research ArticleБИОЛОГИЧЕСКИЕ НАУКИBIOLOGICAL SCIENCESКомнатная муха Musca domestica: эволюция резистентности к инсектицидам в России (обзор литературы)The Housefly Musca domestica: Evolution of Insecticide Resistance in Russia (Literature Review)https://orcid.org/0000-0002-8268-2230ЕрёминаОльга ЮрьевнаEreminaOlga Yu.

Д-р биол. наук, в. н. с. отдела дезинсекции Института дезинфектологии ФБУН «ФНЦГ им. Ф.Ф. Эрисмана», Москва, Россия

e-mail: eremina_insect@mail.ru

Dr. Sci. (Biol.), leading researcher, Institute of Disinfectology, Federal Scientific Center of Hygiene named after F.F. Erisman, Moscow, Russia

e-mail: eremina_insect@mail.ru

eremina_insect@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0002-4736-7905ОлиферВероника ВалентиновнаOliferVeronika V.

Канд. биол. наук, в. н. с. отдела дезинсекции Института дезинфектологии ФБУН «ФНЦГ им. Ф.Ф. Эрисмана», Москва, Россия

e-mail: olifer.vv@fncg.ru

Cand. Sci. (Biol.), leading researcher, Institute of Disinfectology, Federal Scientific Center of Hygiene named after F.F. Erisman, Moscow, Russia

e-mail: olifer.vv@fncg.ru

olifer.vv@fncg.ruИнститут дезинфектологии ФБУН «Федеральный научный центр гигиены им. Ф.Ф. Эрисмана» РоспотребнадзораРоссияInstitute of Disinfection, F.F. Erisman Federal Scientific Center of HygieneRussian Federation2026100820262294103Copyright © Ерёмина О.Ю., Олифер В.В., 20262026Ерёмина О.Ю., Олифер В.В.Eremina O.Y., Olifer V.V.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://www.dezinfectologiya.ru/jour/article/view/89

При изучении резистентности насекомых к инсектицидам важно использовать в качестве эталона сравнения стандартные чувствительные лабораторные культуры. Таковой является культура комнатной мухи Musca domestica S-НИИД, разводимая в инсектарии Института дезинфектологии более 30 лет. Культура S-НИИД показывает уровни чувствительности к инсектицидам, сходные с другими содержащимися в научных лабораториях мира чувствительными культурами, такими как SSS, WHO, Perm-S и др. В ретроспективном исследовании описана устойчивость популяций комнатной мухи в России к действующим веществам из разных химических групп. Приведены данные о резистентности комнатной мухи к хлор- и фосфорорганическим соединениям, пиретроидам, неоникотиноидам, фенилпиразолам при топикальном нанесении. Подтверждён мозаичный характер возникновения резистентности, связанный не с географическим расположением точек сбора насекомых, а с историей применения инсектицидов на конкретных объектах. Выявлены нарастание резистентности к пиретроидам, фенилпиразолам и неоникотиноидам и снижение — к ФОС в европейской части России, резистентность к ацетамиприду, толерантность и высокая резистентность к пиретроидам и др. в Тюменской области. Динамика уровней резистентности отражает интенсивность применения конкретной группы инсектицидов в данный период.

Заключение

Заключение. В разных регионах России обнаружены популяции комнатной мухи, резистентные к ряду инсектицидов. Рекомендовано применение схем ротации действующих веществ в соответствии с механизмами их действия на насекомых.

Ограничения исследования

Ограничения исследования. Исследование направлено на ретроспективное изучение резистентности комнатной мухи к инсектицидам и представляет интерес для специалистов, занимающихся дезинфекционной деятельностью в области дезинсекции.

Вклад авторов

Вклад авторов:Еремина О.Ю. — подбор литературы и написание первого варианта статьи, утверждение окончательного варианта статьи, ответственность за целостность всех частей статьи; Олифер В.В. — редактирование текста, дополнение и утверждение окончательного варианта статьи, ответственность за целостность всех частей статьи. Все соавторы — проведение энтомо-токсикологических исследований, написание и редактирование текста, утверждение окончательного варианта статьи, ответственность за целостность всех частей статьи.

Источник финансирования

Источник финансирования. Авторы заявляют об отсутствии внешнего финансирования при проведении исследования.

Конфликт интересов

Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией данной статьи.

Поступила

Поступила: 10.03.2026 / Принята к печати: 21.07.2026 / Опубликована: 10.08.2026

When studying insect resistance to insecticides, it is important to use standard, susceptible laboratory cultures as a reference. Such a culture is the S-NIID housefly culture, reared in the insectary of the Institute of Disinfection for over 30 years. The S-NIID culture exhibits similar levels of insecticide sensitivity to other susceptible cultures maintained in scientific laboratories worldwide, such as SSS, WHO, Perm-S, and others. This retrospective study describes the resistance to housefly populations in Russia to active ingredients from various chemical groups. Data on housefly resistance to organochlorine and organophosphorus compounds, pyrethroids, neonicotinoids, and phenylpyrazoles applied topically are presented. A mosaic pattern of resistance development is confirmed, linked not to the geographic location of insect collection points, but to the history of insecticide use at specific sites. An increase in resistance to pyrethroids, phenylpyrazoles, and neonicotinoids, a decrease in resistance to organophosphorus compounds were observed in the European part of Russia. Resistance to acetamiprid, tolerance, and high resistance to pyrethroids and other compounds was observed in the Tyumen region. The dynamics of resistance levels reflect the intensity of application of a particular group of insecticides during a given time period.

Conclusion

Conclusion. Housefly populations resistant to a number of insecticides has been identified in various regions of Russia. Rotation of active ingredients based on their mechanisms of action on insects is recommended.

Study limitations

Study limitations. This study aims to retrospectively evaluate housefly resistance to insecticides and is of interest to specialists involved in disinfection and pest control.

Contributions

Contributions: Eremina O.Yu. — selection of literature and writing the first version of the article, approval of the final version of the article, responsibility for the integrity of all parts of the article; Olifer V.V. — text editing, addition and approval of the final version of the article, responsibility for the integrity of all parts of the article. All co-authors — conducted entomological and toxicological studies, wrote and edited the text, approved the final version of the article, and are responsible for the integrity of all parts of the article.

Funding source

Funding source. This study was not supported by any external sources of funding.

Conflict of interest

Conflict of interest. The authors declare no apparent or potential conflicts of interest related to the publication of this article.

Received

Received: 10.03.2026 / Accepted: 21.07.2026 / Published: 10.08.2026

пиретроидынеоникотиноидыфенилпиразолыкомнатная мухарезистентностьдезинфектологияpyrethroidsneonicotinoidsphenylpyrazoleshouseflyresistancedisinfectologyReferencesЕремина О.Ю. Насекомые — механические переносчики возбудителей инфекционных болезней человека (обзор литературы) // Дезинфекционное дело. 2020. № 3. С. 41–54. https://doi.org/10.35411/2076-457X-2020-1-37-54 https://elibrary.ru/ppbfgyEremina O.Yu. Insects — mechanical vectors of pathogens causing human infectious diseases (literature review). Disinfection Affairs. 2020; (3): 41–54. https://doi.org/10.35411/2076-457X-2020-1-37-54 https://elibrary.ru/ppbfgy (In Russ.)Sulaiman I.M., Jacobs E., Simpson S., Kerdahi K. Identification of 18 vector species belonging to Group I, Group II, and Group III "Dirty 22' species known to contaminate food and spread foodborne pathogens: DNA barcoding study of public health importance // Int. J. Trop. Insect Sci. 2017. Vol. 37, N 1. P. 1–10. https://doi.org/10.1017/S1742758416000217 https://elibrary.ru/yxmqefSulaiman I.M., Jacobs E., Simpson S., Kerdahi K. Identification of 18 vector species belonging to Group I, Group II, and Group III "Dirty 22' species known to contaminate food and spread foodborne pathogens: DNA barcoding study of public health importance. Int. J. Trop. Insect Sci. 2017; 37(1): 1–10. https://doi.org/10.1017/S1742758416000217 https://elibrary.ru/yxmqefHafez A.M. First evaluation of field evolved resistance to commonly used insecticides in house fly populations from Saudi Arabian dairy farms // Insects. 2021. Vol. 12, N 12. P. 1120. https://doi.org/10.3390/insects12121120 https://elibrary.ru/uvvilpHafez A.M. First evaluation of field evolved resistance to commonly used insecticides in house fly populations from Saudi Arabian dairy farms. Insects. 2021; 12(12): 1120. https://doi.org/10.3390/insects12121120 https://elibrary.ru/uvvilpKhan H.A.A. Characterization of permethrin resistance in a Musca domestica strain: Resistance development, cross-resistance potential and realized heritability // Pest Manag. Sci. 2019. Vol. 75. P. 2969–2974. https://doi.org/10.1002/ps.5409 https://elibrary.ru/nvnrtkKhan H.A.A. Characterization of permethrin resistance in a Musca domestica strain: Resistance development, cross-resistance potential and realized heritability. Pest Manag. Sci. 2019; 75: 2969–2974. https://doi.org/10.1002/ps.5409 https://elibrary.ru/nvnrtkAbbas N., Abubakar M., Hassan M.W., et al. Risk assessment of flonicamid resistance in Musca domestica (Diptera: Muscidae): resistance monitoring, inheritance, and cross-resistance potential // J. Med. Entomol. 2021. Vol. 58. P. 1779–1787. https://doi.org/10.1093/jme/tjab036 https://elibrary.ru/crnhfjAbbas N., Abubakar M., Hassan M.W., et al. Risk assessment of flonicamid resistance in Musca domestica (Diptera: Muscidae): Resistance monitoring, inheritance, and cross-resistance potential. J. Med. Entomol. 2021; 58: 1779–1787. https://doi.org/10.1093/jme/tjab036 https://elibrary.ru/crnhfjSparks T.C., Crossthwaite A.J., Nauen R., et al. Insecticides, biologics and nematicides: updates to IRAC's mode of action classification — a tool for resistance management // Pestic. Biochem. Physiol. 2020. Vol. 167. P. 104587. https://doi.org/10.1016/j.pestbp.2020.104587 https://elibrary.ru/ztiajjSparks T.C., Crossthwaite A.J., Nauen R., et al. Insecticides, biologics and nematicides: updates to IRAC's mode of action classification — a tool for resistance management. Pestic. Biochem. Physiol. 2020; 167: 104587. https://doi.org/10.1016/j.pestbp.2020.104587 https://elibrary.ru/ztiajjmota-Sanchez D., Wise J.C. The Arthropod Pesticide Resistance Database. 2026. https://www.pesticideresistance.org/search.php (дата обращения: 10.02.2026).Mota-Sanchez D., Wise J.C. The Arthropod Pesticide Resistance Database. 2026. URL: https://www.pesticideresistance.org/search.phpZhang Y., Guo M., Ma Z., et al. Esterase-mediated spinosad resistance in house flies Musca domestica (Diptera: Muscidae) // Ecotoxicology. 2020. Vol. 29, N 1. P. 35–44. https://doi.org/10.1007/s10646-019-02125-y https://elibrary.ru/sgxufbZhang Y., Guo M., Ma Z., et al. Esterase-mediated spinosad resistance in house flies Musca domestica (Diptera: Muscidae). Ecotoxicology. 2020; 29(1): 35–44. https://doi.org/10.1007/s10646-019-02125-y https://elibrary.ru/sgxufbCetin H., Yanikoglu A., Akarsu E., et al. Monitoring of thiamethoxam resistance in Turkish house fly strains, Musca domestica (Diptera: Muscidae) // J. Arthropod Borne Dis. 2023. Vol. 17, N 3. P. 206–213. https://doi.org/10.18502/jad.v17i3.14982 https://elibrary.ru/mxtpbkCetin H., Yanikoglu A., Akarsu E., et al. Monitoring of thiamethoxam resistance in Turkish house fly strains, Musca domestica (Diptera: Muscidae). J. Arthropod Borne Dis. 2023; 17(3): 206–213. https://doi.org/10.18502/jad.v17i3.14982 https://elibrary.ru/mxtpbkKhan H.A.A. Lack of fitness costs associated with resistance to permethrin in Musca domestica // Sci. Rep. 2024. Vol. 14, N 1. P. 245. https://doi.org/10.1038/s41598-023-50469-7 https://elibrary.ru/swbakoKhan H.A.A. Lack of fitness costs associated with resistance to permethrin in Musca domestica. Sci. Rep. 2024; 14(1): 245. https://doi.org/10.1038/s41598-023-50469-7 https://elibrary.ru/swbakoОпределение уровня чувствительности к инсектоакарицидам членистоногих, имеющих медицинское значение: методические указания МУ 3.5.2.4105-24. М.; 2024.Determination of the level of sensitivity of arthropods of medical significance to insectoacaricides: methodological guidelines MU 3.5.2.4105-24. Moscow; 2024. (In Russ.)Соколянская М.П., Амирханов Д.В. Динамика формирования резистентности комнатной мухи к инсектицидам из разных химических классов // Вестник защиты растений. 2008. № 4. С. 22–32. https://doi.org/10.31993/1727-1320 https://elibrary.ru/kaummpSokolyanskaya M.P., Amirkhanov D.V. Dynamics of the formation of resistance of the housefly to insecticides from different chemical classes. Plant Protection Bulletin. 2008; (4): 22–32. https://doi.org/10.31993/1727-1320 https://elibrary.ru/kaummp (In Russ.)Сухорученко Г.И., Долженко В.И., Ганнибал Ф.Б. и др. Резистентность вредных членистоногих, фитопатогенных грибов и грызунов к пестицидам. Санкт-Петербург; 2024. 672 с. https://elibrary.ru/thepjlSukhoruchenko G.I., Dolzhenko V.I., Gannibal F.B., et al. Resistance of harmful arthropods, phytopathogenic fungi and rodents to pesticides. St. Petersburg; 2024. 672 p. https://elibrary.ru/thepjl (In Russ.)Дербенева-Ухова В.П., Морозова В.П. Случай появления ДДТ-устойчивости у комнатной мухи // Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 1950. Т. 19, № 5. С. 464–467.Derbeneva-Ukhova V.P., Morozova V.P. A case of the emergence of DDT resistance in the housefly. Medical Parasitology and Parasitic Diseases. 1950; 19(5): 464–467. (In Russ.)Сухова М.Н., Гвоздева И.В., Мисник М.М. и др. Чувствительность к хлорофосу, трихлорметафосу, метафосу, ДДТ, ГХЦГ, полихлорпинену у популяций комнатных мух после многолетнего применения этих инсектицидов // Гигиена, микробиология и эпидемиология. 1965. № 8. С. 7–13.Sukhova M.N., Gvozdeva I.V., Misnik M.M., et al. Susceptibility to chlorophos, trichlormetaphos, metaphos, DDT, HCH, and polychloropinene in housefly populations after long-term use of these insecticides. Hygiene, Microbiology and Epidemiology. 1965; (8): 7–13. (In Russ.)Рославцева С.А. Резистентность к инсектоакарицидам членистоногих, имеющих эпидемиологическое и санитарно-гигиеническое значение. М.; 2006. https://elibrary.ru/qlnznbRoslavtseva S.A. Resistance to insectoacaricides in arthropods of epidemiological and sanitary-hygienic significance. Moscow; 2006. https://elibrary.ru/qlnznb (In Russ.)Сухова М.Н., Гвоздева И.В., Тетеровская Т.О. и др. О численности популяций синантропных мух в различных районах СССР и путях их дальнейшего уничтожения // Проблемы паразитологии. Киев; 1972. Т. 2. С. 311–312.Sukhova M.N., Gvozdeva I.V., Teterovskaya T.O., et al. On the population size of synanthropic flies in various regions of the USSR and ways of their further destruction. In: Problems of Parasitology. Kyiv; 1972; 2: 311–312. (In Russ.)Рославцева С.А., Еремина О.Ю., Баканова Е.И., Полякова Ю.Б. Изучение некоторых ферментных систем у природных популяций комнатных мух Musca domestica высокорезистентных к фосфорорганическим инсектицидам // Известия РАН. Серия биологическая. 1993. № 5. С. 722–731.Roslavtseva S.A., Eremina O.Yu., Bakanova E.I., Polyakova Yu.B. Study of some enzyme systems in natural populations of houseflies Musca domestica highly resistant to organophosphorus insecticides. Bulletin of the Russian Academy of Sciences. Biological Series. 1993; (5): 722–731. (In Russ.)Еремина О.Ю., Баканова Е.И., Рославцева С.А. Изучение возможностей использования некоторых ферментных систем природных популяций комнатных мух как биологических индикаторов качества окружающей среды // Токсикологический вестник. 1995. № 1. С. 32–38.Eremina O.Yu., Bakanova E.I., Roslavtseva S.A. Study of the possibilities of using some enzyme systems of natural populations of houseflies as biological indicators of environmental quality. Toxicological Bulletin. 1995; (1): 32–38. (In Russ.)Еремина О.Ю., Баканова Е.И., Полякова Ю.В. и др. Биохимические характеристики природных популяций комнатных мух в связи с промышленным и пестицидным загрязнением окружающей среды // Агрохимия. 1997. № 9. С. 73–77.Eremina O.Yu., Bakanova E.I., Polyakova Yu.V., et al. Biochemical characteristics of natural populations of houseflies in connection with industrial and pesticide pollution of the environment. Agrochemistry. 1997; (9): 73–77. (In Russ.)Рославцева С.А., Еремина О.Ю., Баканова Е.И. и др. Исследование механизмов резистентности насекомых к инсектицидам (на примере природных популяций комнатных мух Musca domestica) // Агрохимия. 1998. № 10. С. 14–23.Roslavtseva S.A., Eremina O.Yu., Bakanova E.I., et al. Study of the mechanisms of insect resistance to insecticides (using natural populations of houseflies Musca domestica as an example). Agrochemistry. 1998; (10): 14–23. (In Russ.)Давлианидзе Т.А., Еремина О.Ю., Олифер В.В. Резистентность к инсектицидам комнатной мухи Musca domestica в центре европейской части России // Вестник защиты растений. 2022. Т. 105, № 3. С. 114–121. https://doi.org/10.31993/2308-6459-2022-105-3-15346 https://elibrary.ru/lidwqdDavlianidze T.A., Eremina O.Yu., Olifer V.V. Insecticide resistance of the housefly Musca domestica in the central European part of Russia. Plant Protection Bulletin. 2022; 105(3): 114–121. https://doi.org/10.31993/2308-6459-2022-105-3-15346 https://elibrary.ru/lidwqd (In Russ.)Naqqash M.N., Gökçe A., Bakhsh A., Salim M. Insecticide resistance and its molecular basis in urban insect pests // Parasitol. Res. 2016. Vol. 115, N 4. P. 1363–1373. https://doi.org/10.1007/s00436-015-4898-9 https://elibrary.ru/knemydNaqqash M.N., Gökçe A., Bakhsh A., Salim M. Insecticide resistance and its molecular basis in urban insect pests. Parasitol. Res. 2016; 115(4): 1363–1373. https://doi.org/10.1007/s00436-015-4898-9 https://elibrary.ru/knemydМельничук А.Д., Крестоношина К.С., Кинарейкина А.Г. и др. Анализ инсектицидной устойчивости к пиретроидам, фосфорорганическим соединениям и карбаматам у Musca domestica L. методом ПЦР-ПДРФ // Ветеринария сегодня. 2025. Т. 14, № 1. С. 101–108. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2025-14-1-101-108 https://elibrary.ru/zltowzMelnichuk A.D., Krestonoshina K.S., Kinareykina A.G., et al. Analysis of insecticidal resistance to pyrethroids, organophosphorus compounds and carbamates in Musca domestica L. by the PCR-RFLP method. Veterinary Science Today. 2025; 14(1): 101–108. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2025-14-1-101-108 https://elibrary.ru/zltowz (In Russ.)Левченко М.А., Силиванова Е.А., Хлызова Т.А. и др. Чувствительность природной популяции Musca domestica (Diptera: Muscidae) к пиретроидным инсектицидам // Российский журнал «Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии». 2017. № 4. С. 71–75. https://doi.org/10.36718/1819-4036-2020-12-147-151 https://elibrary.ru/ymeyasLevchenko M.A., Silivanova E.A., Khlyzova T.A., et al. Sensitivity of the natural population of Musca domestica (Diptera: Muscidae) to pyrethroid insecticides. Russian Journal of Problems of Veterinary Sanitation, Hygiene and Ecology. 2017; (4): 71–75. https://doi.org/10.36718/1819-4036-2020-12-147-151 https://elibrary.ru/ymeyas (In Russ.)Полякова Ю.Б. Комнатная муха Musca domestica L. (Diptera, Muscidae) как биоиндикатор техногенного загрязнения окружающей среды // Энтомологическое обозрение. 1998. Т. 77, № 2. С. 289–294. https://elibrary.ru/hvfbbjPolyakova Yu.B. Housefly Musca domestica L. (Diptera, Muscidae) as a bioindicator of technogenic pollution of the environment. Entomological Review. 1998;77(2):289–294. https://elibrary.ru/hvfbbj (In Russ.)Павлов С.Д., Павлова Р.П., Мавлютов С.М. О резистентности насекомых комплекса гнус и комнатной мухи к действию современных инсектицидов // Энтомологические исследования в Северной Азии: материалы VII Межрегионального совещания энтомологов Сибири и Дальнего Востока в рамках Сибирской зоологической конференции (Новосибирск, 20–24 сентября 2006 г.). Новосибирск, 2006. С. 416–418. https://elibrary.ru/ttwhrzPavlov S.D., Pavlova R.P., Mavlyutov S.M. On the resistance of insects of the midge-housefly complex to the action of modern insecticides. In: Entomological studies in Northern Asia: Proceedings of VII Interregional meeting of entomologists of Siberia and the Far East within the framework of the Siberian Zoological Conference (Novosibirsk, September 20–24, 2006). Novosibirsk; 2006: 416–418. https://elibrary.ru/ttwhrz (In Russ.)Давлианидзе Т.А., Еремина О.Ю., Олифер В.В. Кишечное действие современных инсектицидов на мультирезистентные культуры комнатных мух Musca domestica // Вестник защиты растений. 2023. Т. 106, № 3. С. 156–164. https://doi.org/10.31993/2308-6459-2023-106-3-15487 https://elibrary.ru/mkvaspDavlianidze T.A., Eremina O.Yu., Olifer V.V. Intestinal action of modern insecticides on multi-resistant cultures of houseflies Musca domestica. Plant Protection Bulletin. 2023; 106(3): 156–164. https://doi.org/10.31993/2308-6459-2023-106-3-15487 https://elibrary.ru/mkvasp (In Russ.)Scott J.G. Evolution of resistance to pyrethroid insecticides in Musca domestica // Pest Manag. Sci. 2017. Vol. 73, N 4. P. 716–722. https://doi.org/10.1002/ps.4328 https://elibrary.ru/wkcfnvScott J.G. Evolution of resistance to pyrethroid insecticides in Musca domestica. Pest Manag. Sci. 2017; 73(4): 716–722. https://doi.org/10.1002/ps.4328 https://elibrary.ru/wkcfnvRoca-Acevedo G., Boscaro I., Toloza A.C. Global pattern of kdr-type alleles in Musca domestica (L.) // Curr. Trop. Med. Rep. 2023. Vol. 10, N 1. P. 1–10. https://doi.org/10.1007/s40475-022-00281-6 https://elibrary.ru/ibimxqRoca-Acevedo G., Boscaro I., Toloza A.C. Global pattern of kdr-type alleles in Musca domestica (L.). Curr. Trop. Med. Rep. 2023; 10(1): 1–10. https://doi.org/10.1007/s40475-022-00281-6 https://elibrary.ru/ibimxqCиливанова Е.А., Кинарейкина А.Г. Метаболическая резистентность к инсектицидам у комнатной мухи Musca domestica L. (Diptera: Muscidae) // Концептуальные и прикладные аспекты научных исследований и образования в области зоологии беспозвоночных: сборник статей VI Международной конференции (Томск, 20–23 октября 2025 г.) / под ред. А.В. Симаковой. Томск; 2025. С. 131–134. https://doi.org/10.17223/978-5-907890-82-4-2025-26 https://elibrary.ru/wbwyjrSilivanova E.A., Kinareykina A.G. Metabolic resistance to insecticides in the housefly Musca domestica L. (Diptera: Muscidae). In: Conceptual and applied aspects of scientific research and education in the field of invertebrate zoology: collection of articles of the VI International Conference (Tomsk, October 20–23, 2025). Tomsk; 2025: 131–134. https://doi.org/10.17223/978-5-907890-82-4-2025-26 https://elibrary.ru/wbwyjr (In Russ.)Левченко М.А., Силиванова Е.А., Плашкина В.А. и др. Резистентность природных популяций Musca domestica L. к современным инсектицидам // Российский журнал Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии. 2019. № 4. С. 407–412. https://doi.org/10.36871/vet.san.hyg.ecol.201904011 https://elibrary.ru/kfvdtwLevchenko M.A., Silivanova E.A., Plashkina V.A., et al. Resistance of natural populations of Musca domestica L. to modern insecticides. Russian Journal of Problems of Veterinary Sanitation, Hygiene and Ecology. 2019; (4): 407–412. https://doi.org/10.36871/vet.san.hyg.ecol.201904011 https://elibrary.ru/kfvdtw (In Russ.)Левченко М.А. Оценка эффективности фипронила и хлорфенапира против Musca domestica L. на объектах ветеринарного надзора // Вестник Красноярского государственного аграрного университета. 2020. № 12. С. 147–151. https://doi.org/10.36718/1819-4036-2020-12-147-151 https://elibrary.ru/uceubiLevchenko M.A. Evaluation of the effectiveness of fipronil and chlorfenapyr against Musca domestica L. at veterinary inspection sites. Bulletin of Krasnoyarsk State Agrarian University. 2020;(12):147–151. https://doi.org/10.36718/1819-4036-2020-12-147-151 https://elibrary.ru/uceubi (In Russ.)Левченко М.А., Силиванова Е.А., Шумилова П.А., Сенникова Н.А. Инсектицидная чувствительность и ферментативная активность у Musca domestica L. природных популяций // Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии. 2021. С. 428–435. https://doi.org/10.36871/vet.san.hyg.ecol.202104008 https://elibrary.ru/vntmakLevchenko M.A., Silivanova E.A., Shumilova P.A., Sennikova N.A. Insecticide susceptibility and enzymatic activity in Musca domestica L. natural populations. Problems of Veterinary Sanitation, Hygiene and Ecology. 2021: 428–435. https://doi.org/10.36871/vet.san.hyg.ecol.202104008 https://elibrary.ru/vntmak (In Russ.)Силиванова Е.А., Шумилова П.А., Левченко М.А. Чувствительность к инсектицидам и активность ферментов детоксикации у Musca domestica L. (Diptera: Muscidae) природной популяции // Вестник Красноярского государственного аграрного университета. 2020. № 12. С. 102–109. https://doi.org/10.36718/1819-4036-2020-12-102-109 https://elibrary.ru/oizswvSilivanova E.A., Shumilova P.A., Levchenko M.A. Sensitivity to insecticides and activity of detoxification enzymes in Musca domestica L. (Diptera: Muscidae) of the natural population. Bulletin of Krasnoyarsk State Agrarian University. 2020; (12): 102–109. https://doi.org/10.36718/1819-4036-2020-12-102-109 https://elibrary.ru/oizswv (In Russ.)González-Morales M.A., DeVries Z.C., Santangelo R.G., et al. Multiple mechanisms confer fipronil resistance in the German cockroach: Enhanced detoxification and Rdl mutation // J. Med. Entomol. 2022. Vol. 59, N 5. P. 1721–1731. https://doi.org/10.1093/jme/tjac100 https://elibrary.ru/titaqpGonzález-Morales M.A., DeVries Z.C., Santangelo R.G., et al. Multiple mechanisms confer fipronil resistance in the German cockroach: enhanced detoxification and Rdl mutation. J. Med. Entomol. 2022; 59(5): 1721–1731. https://doi.org/10.1093/jme/tjac100 https://elibrary.ru/titaqpBlock C.J., Miles L.S., Lewis C.D., et al. First evidence of the A302S Rdl insecticide resistance mutation in populations of the bed bug, Cimex lectularius (Hemiptera: Cimicidae) in North America // J. Med. Entomol. 2025. Vol. 62, N 3. P. 740–744. https://doi.org/10.1093/jme/tjaf033 https://elibrary.ru/bomgstBlock C.J., Miles L.S., Lewis C.D., et al. First evidence of the A302S Rdl insecticide resistance mutation in populations of the bed bug, Cimex lectularius (Hemiptera: Cimicidae) in North America. J. Med. Entomol. 2025; 62(3): 740–744. https://doi.org/10.1093/jme/tjaf033 https://elibrary.ru/bomgstНурисламова А.Р., Кинарейкина А.Г., Янгирова Л.Я. и др. Сравнительная токсичность хлорфенапира для имаго Musca domestica разных линий // Вестник Красноярского государственного аграрного университета. 2024. № 12. С. 113–120. https://doi.org/10.36718/1819-4036-2024-12-113-120 https://elibrary.ru/pjwuuaNurislamova A.R., Kinareykina A.G., Yangirova L.Ya., et al. Comparative toxicity of chlorfenapyr for Musca domestica adults of different lines. Bulletin of Krasnoyarsk State Agrarian University. 2024; (12): 113–120. https://doi.org/10.36718/1819-4036-2024-12-113-120 https://elibrary.ru/pjwuua (In Russ.)Ihara M. Ligand-gated ion channels as targets of neuroactive insecticides // Biosci. Biotechnol. Biochem. 2022. Vol. 86, N 2. P. 157–164. https://doi.org/10.1093/bbb/zbab202 https://elibrary.ru/goruoxIhara M. Ligand-gated ion channels as targets of neuroactive insecticides. Biosci. Biotechnol. Biochem. 2022; 86(2): 157–164. https://doi.org/10.1093/bbb/zbab202 https://elibrary.ru/goruoxSial M.U., Mehmood K., Saeed S., et al. Neonicotinoid's resistance monitoring, diagnostic mechanisms and cytochrome P450 expression in green peach aphid [Myzus persicae (Sulzer) (Hemiptera: Aphididae)] // PLoS One. 2022. Vol. 17, N 8. P. e0272184. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0272184 https://elibrary.ru/sthkzuSial M.U., Mehmood K., Saeed S., et al. Neonicotinoid's resistance monitoring, diagnostic mechanisms and cytochrome P450 expression in green peach aphid [Myzus persicae (Sulzer) (Hemiptera: Aphididae)]. PLoS One. 2022; 17(8): e0272184. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0272184 https://elibrary.ru/sthkzuZhang K., Chen L., Chen J., et al. Mutation V65I in the β1 subunit of the nicotinic acetylcholine receptor confers neonicotinoid and sulfoxaflor resistance in insects // J. Agric. Food Chem. 2024. Vol. 72, N 11. P. 5671–5681. https://doi.org/10.1021/acs.jafc.3c09456 https://elibrary.ru/whxhgiZhang K., Chen L., Chen J., et al. Mutation V65I in the β1 subunit of the nicotinic acetylcholine receptor confers neonicotinoid and sulfoxaflor resistance in insects. J. Agric. Food Chem. 2024; 72(11): 5671–5681. https://doi.org/10.1021/acs.jafc.3c09456 https://elibrary.ru/whxhgiAbbas N., Ijaz M., Shad S.A., Binyameen M. Assessment of resistance risk to fipronil and cross resistance to other insecticides in the Musca domestica L. (Diptera: Muscidae) // Vet. Parasitol. 2016. Vol. 223. P. 71–76. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2016.04.026Abbas N., Ijaz M., Shad S.A., Binyameen M. Assessment of resistance risk to fipronil and cross resistance to other insecticides in the Musca domestica L. (Diptera: Muscidae). Vet. Parasitol. 2016; 223: 71–76. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2016.04.026Abbas N., Khan H.A.A., Shad S.A. Resistance of the house fly Musca domestica (Diptera: Muscidae) to lambda-cyhalothrin: mode of inheritance, realized heritability, and cross-resistance to other insecticides // Ecotoxicology. 2014. Vol. 23. P. 791–801. https://doi.org/10.1007/s10646-014-1217-7 https://elibrary.ru/pdecohAbbas N., Khan H.A.A., Shad S.A. Resistance of the house fly Musca domestica (Diptera: Muscidae) to lambda-cyhalothrin: mode of inheritance, realized heritability, and cross-resistance to other insecticides. Ecotoxicology. 2014; 23: 791–801. https://doi.org/10.1007/s10646-014-1217-7 https://elibrary.ru/pdecoh

The authors declare that there are no conflicts of interest present.